RFT151 高分子量非变性电泳蛋白质Mark

产品简介
高分子量非变性电泳蛋白质Mark由专业试剂供应商北京百奥莱博提供,用于科研试验,高分子量非变性电泳蛋白质Mark是我司众多优质蛋白质研究之一,质量堪比同类进口产品,价格非常优惠,目前正热烈促销中,恭候您的咨询订购。...
产品详细介绍
特别提示:包括高分子量非变性电泳蛋白质Marker(66~669 kD)在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!
产品名称:高分子量非变性电泳蛋白质Marker(66~669 kD)
英文名称:High Molecμlar Weight Native Electrophoresis Protein Marker
产品货号:RFT151
产品规格:20次(100μl)
本产品是5种高纯蛋白质干粉混合物,总蛋白含量为250μg。具体蛋白含量如下:
| 蛋白名称 | 分子量(kD) | 蛋白来源 | 蛋白含量(μg) |
| Thyroglobμlin | 669 | porcine thyroid | 76 |
| Ferritin | 440 | equine spleen | 50 |
| Catalase | 232 | bovine liver | 36 |
| Lactate dehydrogenase | 140 | bovine heart | 48 |
| Albumin | 66 | bovine serum | 40 |
分子量范围为66kD-669kD,经过非变性电泳后,用考马斯亮蓝染色后可以得到分布均匀密度相近的5条带。
使用说明:
1. 取100μl非变性蛋白上样缓冲液(1×)加入到蛋白干粉混合物中,彻底混匀融化后,-20℃贮存。
2. 常温融化后,彻底混匀,上样电泳。
注:上样量根据胶的厚度和梳子的宽度确定。一般说来,0.75mm×5mm(厚度×宽度)的加样孔上样5μl,其他规格梳子请适当调整上样量。
3. 电泳结束后,染色,观察结果。
注:使用银染时,由于灵敏度高于考马斯亮蓝染色方法,可以适当降低Marker上样量,一般稀释50倍。
注意:
1. 本蛋白Marker不适用于变性蛋白电泳(SDS-PAGE),因为在SDS存在下,含有多个亚单位的蛋白会不同程度解聚。
2. 在非变性条件下,蛋白的迁移与蛋白的电荷、蛋白形状以及蛋白分子量都有关。因此,在一种凝胶浓度下使用本Marker不能估计出目的蛋白的分子量。非变性电泳中,蛋白分子量的确定应该是在不同凝胶浓度下,确定出蛋白的Rf值,绘制出凝胶浓度对Rf的曲线从而判定蛋白的分子量。
储存条件:-20℃,有效期12个月。
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储存条件:常温运输,4℃保存,有效期两年。
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CHAPS全名是(3-[(3-Cholamidopropyl)dimethylammonio]-1-propanesulfonate),中文名是3-[(3-胆酰胺基丙基)二甲基铵基]-1-丙磺酸盐,多一个羟基就是CHAPSO,全名是3-[(3- 胆酰胺基丙基)二甲基铵基]-2- 羟基-1- 丙磺酸盐。它们的特点是能够破坏非特异性蛋白相互作用。与非离子型去垢剂相比引起蛋白聚集的几率更小。电中性并且不会引起变性。可以通过透析去除。
储存条件:常温运输和保存,有效期一年。
名称:His标签蛋白纯化试剂盒(可溶性蛋白)
货号:WE0267
规格:5ml
本试剂盒包含Ni-Agarose填料、亲和柱空柱以及可溶性His融合蛋白纯化所需的全部试剂(细菌裂解液、蛋白酶抑制剂混合物、结合缓冲液和洗脱缓冲液组分),使用方便。该镍柱纯化系统对6×His-tag蛋白具有显著特异吸附能力,能够一步纯化带有6个组氨酸亲和标签的蛋白。该系统具有4个Ni2+螯合位点,较只有3个螯合位点的Ni-IDA结合Ni2+更为牢固,有效防止纯化过程中Ni2+脱落且增强对His标签蛋白的结合能力,提高纯化效率。较高的基团密度,大大提高了蛋白载量。该系统在天然或变性条件下,对来源于各种表达系统(如杆状病毒,哺乳细胞,酵母以及细菌)中的His标签蛋白,均有很好的纯化效果。本产品已螯合镍离子,可直接用可溶性蛋白的纯化,使用方便,快捷。
镍柱参数:
支持物:CL-6B琼脂糖凝胶
载量:20-30 mg His标签蛋白/ml填料
粒径:50-160μM
试剂盒组成:
| 组份 | 5ml |
| Ni-Agarose Resin | 5ml |
| Bacterial Protein Extraction Reagent | 65ml |
| 1 M Tris-HCl(pH7.9) | 15ml |
| 1 M Imidazole | 65ml |
| 3 M NaCl | 120ml |
| Protease Inhibitor Cocktail | 700μl |
| 吸附柱(12ml) | 一套 |
保存条件:Protease Inhibitor Cocktail,-20℃;Ni-Agarose Resin,2~8℃,避免冷冻;其它组分,2~8℃
注意事项:
1、在纯化之前采用电泳检测蛋白的可溶性,本试剂盒只适合于可溶性蛋白的纯化,如需纯化包涵体蛋白,请选择我公司的包涵体蛋白纯化试剂盒,货号为WE0266。
2、缓冲液中不建议使用 β-巯基乙醇、DTT和EDTA。
3、整个纯化过程中切忌凝胶脱水变干。
4、为提高纯化效率,先确定Binding Buffer和Elution Buffer中咪唑的zuì佳使用浓度。必要时可以使用线性或梯度浓度的咪唑浓度,Binding Buffer的范围为0-10 mM,洗脱缓冲液的范围为10-500 mM来进行。并通过SDS-PAGE或Western Blotting来检测目的蛋白的纯度。
5、请使用高纯度的试剂配制缓冲液,并通过0.22μM或者0.45μM过滤器过滤。为避免柱子被堵塞,建议将裂解液进行离心,或者使用0.22μM或者0.45μM过滤器过滤。
6、柱再生时,保证每步洗完后都要用足够的去离子水冲洗至中性。
使用方法:
I 缓冲液的准备
可溶性蛋白纯化缓冲液配方:
| 组份 | Tris-HCl(pH7.9) | Imidazole |
NaCl |
| Soluble Binding Buffer | 20 mM | 10 mM |
0.5 M |
| Soluble Elution Buffer | 20 mM | 500 mM |
0.5 M |
II 组装层析柱
1、将Ni-Agarose Resin填料混匀后加入层析柱,室温静置10分钟,待凝胶与溶液分层后,把底部的出液口打开,让乙醇通过重力作用缓慢流出。
注意:
1)填料的上层是乙醇保护层,将填料和乙醇一起混匀,以每ml填料纯化20-30mg His标签蛋白计算,取需要的填料与乙醇的混合液加入层析柱。
2)如果乙醇不流出,可以给柱子一个外力,例如用大拇指对柱口轻轻按压一下,迫使乙醇流出。
3)本实验都是通过重力作用使溶液流出。
2、向装填好的柱中加入5倍柱体积的去离子水将乙醇冲洗干净后,再用10倍柱体积的Binding Buffer平衡柱子,平衡结束后即可上样。
注意:柱体积指的是填料的体积。
III 可溶性蛋白的纯化
1、收集菌体后,每100 mg菌体(湿重)加入1-5ml细菌裂解液(每1ml 细菌抽提试剂中已加入10μl 蛋白酶抑制剂混合物),超声裂解菌体。
注意:
1)当提取物粘度高或提取蛋白为包涵体时,建议加入DNase I和Lysozyme。每1ml 细菌抽提试剂中加入1μl DNase I(1000U/ml),2μl Lysozyme(50 mg/ml),DNase I和Lysozyme可单独从我公司购买,货号:Lysozyme(#WE0214)、 DNase I(#WE0213A),如使用其它公司产品,请按照相应说明书操作。
2)超声过程中保持菌液处于冰浴中,超声条件依赖于所使用的超声仪功率,探头种类,容器的大小形状,需实验中自己摸索,应避免连续超声导致的大量产热,可分成短时间,多次超声,通过一定的间隔时间避免溶液过热。zuì终菌液变清即可。
2、10000 rpm,4℃离心3分钟,收集上清中的可溶性蛋白。
3、用Binding Buffer将菌体裂解液等倍稀释后负载上柱,流速为10倍柱体积/小时,收集流穿液。
注意:
1)本试剂盒中附带有一块筛板,使用时先将筛板加至填料的上层,该筛板可用于杂质较多的蛋白的过滤,防止过多的杂蛋白堵塞柱子的作用。再将处理好的样品负载上柱,但是筛板放入柱子后就不易取出。
2)通过控制加入的菌体裂解液的速度来控制流速。
4、使用15倍柱体积的Soluble Binding Buffer冲洗柱子,洗去杂蛋白。
5、使用适量Soluble Elution Buffer洗脱,收集洗脱峰。
注意:洗脱峰可以分管收集,每1ml收集1管,并采用蛋白监测仪监测,收集洗脱峰。
6、洗脱后,依次使用10倍柱体积的去离子水洗涤柱子,再用3倍柱体积的20%乙醇平衡(乙醇要将填料浸没),封柱后2~8℃保存。
注意:如果是分段梯度洗脱,zuì大洗脱缓冲液中咪唑浓度未达到500 mM时,则使用浓度为500 mM的咪唑进行洗脱10倍柱体积后,再进行第6步的操作。
Ⅳ 柱再生
当填料使用多次后,结合效率会有所下降(表现为流速变慢或填料失去蓝绿色),可以用以下方法再生,提高填料的使用寿命和蛋白质的结合效率。
1、使用2倍柱体积的6 M盐酸胍冲洗后,使用3倍柱体积的去离子水冲洗。
2、使用1倍柱体积的2% SDS冲洗。
3、依次使用1倍柱体积的25%、50%、75%和5倍柱体积的乙醇冲洗,再依次使用1倍柱体积的75%、50%和25%的乙醇冲洗。
4、使用1倍柱体积的去离子水冲洗。
5、使用5倍柱体积含50 mM EDTA缓冲液(PH8.0)冲洗。
6、使用3倍柱体积去离子水,3倍柱体积20%乙醇冲洗。
7、2~8℃保存。
8、再次使用前,需先使用10倍柱体积去离子水冲洗,然后使用5个柱体积的50 mM NiSO4再生,3个柱体积的Binding Buffer平衡。
储存条件:-20℃
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