XH006 酵母线粒体DNA提取试剂盒

产品简介
酵母线粒体DNA提取试剂盒是高品质的DNA提取纯化产品,由北京百奥莱博供应,本产品用于生化实验研究等领域,本品质量稳定,价位合理,需要酵母线粒体DNA提取试剂盒等DNA提取纯化产品的客户,请到我公司官网联系我们。...
产品详细介绍
特别提示:包括酵母线粒体DNA提取试剂盒在内,本公司的所有产品仅可用于科研实验,严禁用于临床医疗及其他非科研用途!
产品名称:酵母线粒体DNA提取试剂盒
英文名称:Yeast Mitocho
产品货号:XH006
产品规格:50T|100T
本试剂盒用于从酵母中分离出完整而纯化的线粒体DNA。利用差速离心得到比较纯净的线粒体,再利用DNA酶消化和裂解缓冲系统等多步骤去掉核DNA,zuì后得到纯净的线粒体DNA。可用于PCR等对纯度要求较高的实验。
试剂盒组成:
| 组份 | 50T | 100T | 保存温度 |
| DNase I | 12mg | 22mg | -20℃溶解后分装 |
| RNase A | 0.5ml | 1ml | -20℃保存经常使用可2~8℃放置 |
| 蜗牛酶 | 500mg | 1g | -20℃ |
| β-巯基乙醇 | 1.0ml | 1.0ml | RT |
| 山梨醇缓冲液 | 30ml | 60ml | 2~8℃ |
| 原生质体裂解液 | 100mL | 200 mL | 2~8℃ |
| 线粒体清洗液 | 25 mL | 50 mL | 2~8℃ |
| DNA酶反应液 | 6ml | 12ml | 2~8℃ |
| 线粒体裂解液 | 10ml | 20ml |
常温放置, 如有沉淀可37℃水浴 |
| 蛋白沉淀液 | 7.5ml | 15ml | 2~8℃ |
| 核酸助沉剂 | 0.5ml | 1ml | 2~8℃ |
| TE缓冲液 | 25ml | 50ml | 2~8℃ |
保存条件:2~8℃可保存一年,DNASE I、RNase A和蜗牛酶-20℃保存。使用前,在DNASE I中加入600μl(50T)或者1100μl(100T)的DNA酶反应液,分装后-20℃保存三个月,如果超过三个月,活性可能会降低,请自行订购DNASE I。线粒体裂解液使用前常温保存,如有沉淀可37℃水浴溶解,不影响使用。
操作步骤:
准备工作:在DNASE I中加入600μl(50T)或者1100μl(100T)的DNA酶反应液,适当分装后-20℃保存。线粒体裂解液保存于常温,如有沉淀37℃水浴溶解,离心机温度下降到4℃(2~8℃),如无低温离心机,也可以常温离心,并将离心时间减半,但zuì后所得DNA品质及产量可能会有一定影响。
1.取新鲜培养的1-5ml酵母培养物(约5×107细胞,湿重50mg或者50μl体积)离心后的收集物(4℃,1000×g离心5min)。双蒸水洗一到两次。离心,尽量弃上清。取50μl山梨醇缓冲液洗一次,离心,弃上清。
2.酵母沉淀用0.5ml山梨醇缓冲液重悬,加入10mg蜗牛酶,再加入5μl β-巯基乙醇,混匀(如果一次提取样本较多,可取0.5ml山梨醇缓冲液重悬,加入10mg蜗牛酶,再加入5μl β-巯基乙醇预混匀,混匀后每管样本加入0.5ml重悬酵母),30℃水浴1-2小时。4℃,1000×g离心5min,弃上清,得到原生质体。将得到的原生质体用0.5ml原生质体裂解液重悬,再次离心,弃上清,得到原生质体。
3.将得到的原生质体用0.5ml原生质体裂解液重悬,并转移到小容量玻璃匀浆器内,0℃冰浴研磨10~20次;
4.将研磨物放置合适的离心管,4℃,1000×g离心5min;
5.取上清,加入一新的离心管中,4℃,16,000×g离心10min。离心后的上清含胞浆成分,可从中提取胞浆蛋白。将上清转移到新离心管,线粒体沉淀在管底。
6.在线粒体沉淀中加入0.5 mL线粒体清洗液重悬线粒体沉淀,4℃,1000×g离心5min;取上清,加入一新的离心管中,4℃,16,000×g离心10min。弃上清,高纯度的线粒体沉淀在管底;
7.加入100μl DNA酶反应液重悬线粒体,吹打均匀后,再加入10μl DNASE I溶液(见准备工作),混匀,37℃水浴10min。此步为消化线粒体表面吸付的核DNA。4℃,16,000×g离心5min。尽可能的弃上清,再加入200μl TE重悬线粒体沉淀,4℃,16,000×g离心5min,洗去残留的DNA酶。
8.得到的沉淀,用200μl TE缓冲液重悬线粒体沉淀,加入10μl RNase A。加入200μl线粒体裂解液,轻轻混匀(不可吹打),放置1~2min,再加入150μl蛋白沉淀液,迅速混匀。4℃,16,000×g离心5min。此步骤可进一步去除核DNA。
9.取上清,加入一新的离心管中(如用于酶切分析,可加入此步:选用等体积的酚lǜ仿异戊醇25:24:1抽提一次,再用lǜ仿抽提一次,或者直接用lǜ仿抽提两次,一般来说,此步可去掉一些微量蛋白及糖类,但会造成线粒体DNA的损失,因而用于PCR时可省,并不影响后续实验),加入0.6倍体积的异丙醇(如无异丙醇,可加入2.5倍体积的乙醇沉淀DNA,如离心管太满可分两管)及5-10μl核酸核酸助沉剂,混匀,-20℃沉淀半小时左右(此步可省),4℃,16,000×g离心10min。
10.弃上清,再加入1ml 70%乙醇清洗,4℃,16,000×g离心5min。重复用70%乙醇洗一次。
11.弃上清,再次离心1min吸弃上清,不要碰到管底,开盖凉干约5-10min。
12.加入20-30μl TE缓冲液,轻弹管底,37℃水浴5分钟,线粒体DNA溶解。
13.进行DNA电泳检测及-20℃保存,进行下步的实验。
注意事项:
1.为保证获得完整及尽可能多的线粒体,匀浆条件要示:是全程低温操作。第二是快速。第三,如有条件可将匀浆后的碎片在显微镜下观察。
2.如进行Western Blot和2D-胶电泳,可直接在第6步的沉淀中加入上样缓冲液裂解线粒体。
3.线粒体DNA本身含量很低,如果电泳检测不到,可加大上样量,用更少量的TE溶解沉淀,或者直接进入PCR检测。
4.以离心力g计算正确的离心速度,不同的离心机可据此计算离心速度。
一般低温度心机都有离心力显示,如果没有,可以用以下公式简单的换算。
G=1.11×(10-5)×R×[rpm]2
G为离心力,一般以g(重力加速度)的倍数来表示;[rpm]2即:转速的平方;R为半径,单位为厘米。
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规格:50次
本试剂盒是在我司动物DNA提取试剂盒的基础上改良而得的柱式升级产品,主要用于快速提取新鲜或冷冻的动物组织中的基因组DNA。
产品特点:
1. DNA更加纯净,大多数DNA样品的OD260/280值在1.8-1.9之间。
2. DNA产率一般在200μg/g左右(跟组织种类密切相关)。
3.可直接用于PCR、酶切、杂交等后续反应。
4. 操作更加简单,离心吸附操作代替离心沉淀,整个过程室温操作约10分钟,适合大规模样品处理。
5. 安全,本试剂盒对人体,无腐蚀性和刺激性气味。
6. 高,质量和国外同类产品相当,但价格更。
试剂盒组成:
| 成分 | 规格 |
| 溶液A | 40ml |
| 溶液B | 20ml |
| 溶液C | 50ml |
| 离心吸附柱 | 50套 |
| 通用洗柱液 | 50ml |
| DNA洗脱液2.0 | 10ml |
| 说明书 | 1份 |
储存条件:常温运输和保存、有效期一年。
使用方法:
注意:溶液A容易产生沉淀,溶液B十分粘稠,用前均需要在65℃水浴中加热使沉淀溶解或粘稠度降低,用前充分摇匀。
1. 根据使用材料的不同进行下列操作:
a)对贴壁细胞:吸尽培养液,在每10平方厘米细胞中加入0.8mL预热的溶液A,用枪充分吹打以确保细胞全部裂解,然后把裂解液转移到1.5mL塑料离心管中。
b)对悬浮细胞:离心收集细胞,吸尽液体,在每1-5×106悬浮细胞中加入0.8mL预热的溶液A,用枪充分吹打以确保细胞全部裂解。然后把裂解液转移到1.5mL塑料离心管中。如果是fibroblasts或carcinoma细胞,0.8mL溶液A的细胞使用量不要超过1×106个细胞。
c)对新鲜或冷冻的组织:先将剪切成小块的新鲜组织或冷冻保存的组织放入10mL或15mL塑料离心管中,每50-100mg组织加0.8mL预热的溶液A,用剪切式匀浆器匀浆30秒左右,然后把裂解液转移到1.5mL塑料离心管中。对肝、脾、胰、肾等细胞分裂十分旺盛的组织(细胞中含大量正在复制的DNA),建议组织的使用量不要超过50mg。
d)对DNAhold保存组织:先用纸吸去DNAhold液体后再剪切成小块,其余操作同新鲜或冷冻组织的处理。
2. 加入0.4mL预热的溶液B到裂解液中。由于溶液B十分粘稠,可将1mL枪头剪掉一截再用,也可以用称量方法加0.4 g。加入溶液B后需要颠倒数次充分混匀。
3. 65℃水浴5-10分钟。如果室温放置,DNA产量将降低10-20%。
4. 加入0.2mL自备lǜ仿,振荡器上充分振荡混均30秒,此时溶液将呈乳白色。一定要确保离心管底的液体被震荡起来。
5. 12000~15000g室温离心2分钟。上清透明,中间层为白膜(蛋白层)。
6.小心将上清液平均转移到两个新的离心管中,避免触及中间的白膜。
7. 每个管中加入1.5倍体积的溶液C,充分颠倒混匀。
8. 分两次上柱(即先转移一半的混合液到离心吸附柱中,室温放置2分钟,12000~15000g室温离心半分钟,弃穿透液,然后再将剩下的混合液到离心吸附柱中,室温放置2分钟,12000~15000g室温离心半分钟,弃穿透液)。
9. 加0.7mL通用洗柱液到离心吸附柱中,12000~15000g室温离心半分钟,弃穿透液。
10. 加0.3mL通用洗柱液到离心吸附柱中,12000~15000g室温离心半分钟,弃穿透液。
11. 12000~15000g室温再离心半分钟。此步十分重要,否则残留的通用洗柱液会污染DNA。
12.室温放置半分钟使残留乙醇挥发。
13. 将离心吸附柱转移到一新的1.5mL塑料离心管中,加入50-100μL DNA洗脱液2.0,室温放置离心吸附柱1-2分钟。
14. 12000~15000g室温离心半分钟,离心管中溶液即为DNA样品,可以立即使用或存放于冰箱待用。
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