QN4110 葡聚糖凝胶LH-20

葡聚糖凝胶LH-20是高品质的分离试剂类产品，由北京百奥莱博供应，本产品用于生化实验研究等领域，葡聚糖凝胶LH-20是我司众多优质分离试剂类之一，质量堪比同类进口产品，价格非常优惠，目前正热烈促销中，恭候您的咨询订购。

北京百奥莱博科技有限公司是一家专业的生物试剂销售公司。公司主要经营血清、抗原、抗体等生物试剂产品，可以为您提供专业的技术服务，以优良的价格、优质的服务、优先的理念，满足客户的各方面的需求，与国内多家企业、单位建立了良好的长期合作关系，拥有较好的企业信誉和品牌形象。

特别提示：包括葡聚糖凝胶LH-20在内，本公司的所有产品仅可用于科研实验，严禁用于临床医疗及其他非科研用途！

产品名称：葡聚糖凝胶LH-20
英文名称：Sephadex LH-20
产品货号：QN4110
产品规格：25g|100g|500g

Sephadex G型葡聚糖凝胶只适合在水相中使用，羟基化得到的Sephadex LH-20适合用于有机溶剂分离嗜脂性分子，在有机溶剂中纯化天然产物。利用分子筛作用，适合用有机溶剂分离嗜脂性分子，可以非常经济地大规模制备各种天然产物；如：类固醇、萜类、脂类以及小分子多肽等

葡聚糖凝胶LH-20分离主要以凝胶过滤为主，兼具反相分配的作用。在凝胶过滤的作用下，大分子化合物的保留力弱，先被洗脱下来，分子zuì小的zuì后出柱；在反相洗脱溶剂中，起反相分配作用，性大的物质的保留弱先被洗脱，性小的化合物后出柱

技术参数：
性状：多孔，白色微球
基质：交联葡聚糖
粒径：100～200目
工作pH：2～11
操作温度：4～40℃
球蛋白分离范围：100～4000
排阻限：4～5kd(与所用溶剂有关)
保存条件：4～25℃

使用说明：
1．凝胶悬浮液的制备
  将干粉浸泡于60-70%乙醇中，充分搅拌过夜，洗去可能存在的残留物，根据自己的洗脱液平衡层析至少两个柱体积直到基线平稳为止。
2．洗脱溶剂
  如果样品性大，选用反相溶剂洗脱（甲醇-水），样品用zuì少体积的甲醇-水溶解，过滤上柱；如果样品性小，选用lǜ仿-甲醇正相洗脱。
3．样品处理
  用尽量少的洗脱试剂溶解样品，常压过滤。
4．湿法上柱
5．洗脱
  控制流速，一般小于1drop/s。
6．再生以后下次使用

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苯基-琼脂糖凝胶H.P.是将苯基键合在琼脂糖凝胶上形成的一种可利用疏水相互作用来实现目标产品纯化分离的疏水类介质。用于生物大分子和乙肝疫苗的纯化分离。本品为白色球状凝胶,无嗅、无味、无肉眼可见杂质。

技术参数：
配基：R-OCH2-CH(OH)-CH2-O-C6H5
基质：6%交联琼脂糖
粒径：24～44μm
配基密度：25μmol苯基/mL介质
推荐流速：zuì高100cm/h(内径16mm、柱长10cm，柱床高5cm，25℃，流动相为0.1mol/L NaCl)
耐压：0.15MPa
工作温度：4～40℃
pH适用范围：2～14(短时间，在位清洗)；3～13(长时间)
化学稳定性：1mol/L醋酸、8mol/L尿素、6mol/L盐酸胍、30%异丙醇、70%乙醇、2%SDS，在以上溶液中稳定
保存：密封贮存在4～30℃(保存溶液为20%乙醇+0.1M醋酸钠)，通风、干燥、清洁的地方，不能冷冻，保质期5年，用过的柱子贮存在4℃(20%乙醇)。

操作步骤：
1．装柱
① 让所有的材料和试剂达到室温。配制初始缓冲液（平衡液）和洗脱缓冲液。
② 根据柱子大小取所需量的凝胶，清洗掉20%乙醇，抽干，用初始缓冲液（按凝胶：缓冲液=3：1的比例）配成匀浆。
③ 将柱内及柱子底端用水或缓冲液润湿并保持一小段液位（液面略高于滤膜），务必使底端无气泡。
④ 用玻璃棒引导匀浆沿着柱内壁一次性倒入柱内，注意勿使产生气泡。打开柱子出液口，使凝胶在柱内自由沉降，连结好柱子顶端柱头。
⑤ 打开蠕动泵，让缓冲液用使用时流速的1.33倍的流速流过，使柱床稳定。用2～3倍柱体积的缓冲液平衡柱子。
2．平衡
  让平衡缓冲液以一定流速流过柱子，到流出液电导和pH不变。平衡缓冲液一般是高盐浓度的缓冲液，如0.02～0.05mol/L的PBS加1～2.5mol/L(NH4)2SO4等。
3．上样
① 样品用平衡液配制，浑浊的样品要离心和过滤后上样。
② 一般情况是让目标产品结合在柱子上，用平衡液洗去杂质，再选择一种洗脱液洗下目标产品。
③ 介质对样品组分吸附的程度取决于样品的疏水性质、流动相的离子强度和温度。盐浓度大、温度高或样品组分疏水性强，介质对组分吸附牢。
4．洗脱
  疏水介质可用减小盐浓度进行洗脱。加表面活性剂或有机溶剂可加强洗脱。zuì常用的洗脱液是低盐浓度缓冲液，如0.02～0.05mol/L的PBS。
5．再生
  一般用低盐浓度的缓冲液洗，洗10倍以上柱体积，接着用结合蛋白的平衡液洗到平衡，可再次使用。若有失活蛋白质或脂类物质在再生时洗不掉，可用在位清洗（CIP）除去。
6．在位清洗
① 对于以离子键结合上去的蛋白，可以用2M NaCl去除。
② 对沉淀蛋白、对以疏水性结合的蛋白或脂类，可用1M NaOH去除。
③ 对强疏水性结合的蛋白、脂类等，用4～10倍柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗，但要注意有机溶剂的浓度以梯度的方式逐渐增加，否则容易产生气泡。
清洗完毕后，用至少3倍缓冲液平衡柱子。
7．注意
  在装柱、使用和保存柱子的时候，要避免柱子流干，气泡进入。
8．去热源
  用0.5M的氢氧化钠清洗柱子5～6小时或用0.1M的氢氧化钠24小时。或用以下方法步骤去除：
① 2倍柱体积的70%乙醇；
② 2倍柱体积50mM Tris-HCl pH7.5；
③ 1倍柱体积4M尿素；
④ 3倍柱体积的Tris缓冲液+0.1M NaCl；
  上缓冲液都在无热源的双蒸水中配制。
9．消毒 用0.5～1M NaOH室温下洗8～10倍柱体积，初始缓冲液平衡柱子。

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